Rna World

Front 1

snRNP

Back 1

קומפלקס של חלבונים ו-snRNA (שלהם הפעילות הקטליטית), תפקידם לזהות את ה-Splice site. מרכיבים את ה-spliceosome.

Front 2

Sxl

Back 2

Sex-lethal, פקטור שחבור בדרוזופילה, שעובר שחבור בעצמו ואינו פעיל אצל זכרים

Front 3

tra

Back 3

פקטור שחבור בדרוזופילה, עובר בעצמו שחבור ע"י Sxl, וגם אינו פעיל בזכרים

Front 4

dsx

Back 4

עובר שחבור על ידי tra, ואינו פעיל בזכרים, מפעיל גנים נקביים.

Front 5

DSCAM

Back 5

גן בעל 38 אלף אפשרויות שחבור, מתבטא בנוירונים ומונע מהם לסגור סינפסה עם עצמם.

Front 6

α-tropomyosin

Back 6

עובר שחבור שונה בהתאם לרקמה

Front 7

שרשרת µ

Back 7

על ישי שחבור נקבע אם הנוגדן יהיה ממברנלי או מופרש.

Front 8

FGF receptor

Back 8

קושר ליגנדים שונים בהתאם לשחבור שעבר (שחבור של הbinding site)

Front 9

NMD

Back 9

Nonsense mediated decay, אם הסטופ קודון לא נמצא באקסון האחרון (או בסוף של אחד לפני) הריבוזום ישלח את הmRNA לדגרדציה.

Front 10

EJC

Back 10

Exon junction complex, מונח על אתר השחבור לאחר השחבור, וכך הריבוזום מזהה PTC.

Front 11

PTC

Back 11

premature termination codon, סטופ קודון מוקדם מהתקין.

Front 12

PTB

Back 12

פידבק שלילי על ידי שחבור: תוצר הגן גורם ל-exon skipping בגן עצמו ונוצר PTC.

Front 13

EST

Back 13

Expressed sequence tags, שיטה לזיהוי שחבור חלופי, לוקחים את כל הmRNA יוצרים cDNA מכניסים לוקטור ומרצפים ואז משווים לגנום.

Front 14

Exon array

Back 14

Array עם פרוב לכל אקסון ואז ניתן לראות איזה מהם נמצאים בmRNA.

Front 15

Splicing sensitive microarray

Back 15

array עם פרובים של נקודות השחבור עצמן.

Front 16

RNA-seq

Back 16

ריצוף מאסיבי של כל הRNA.

Front 17

ESE, ESS, ISE, ISS

Back 17

exon/intron splicing enhances/silencer.

Front 18

SR proteins

Back 18

פקטורי שחבור, נקשרים לESE, ESS, ISE, ISS. השם: S לSerine ו-R לארגינין (שחוזרים)

Front 19

Comparative genomics

Back 19

השוואת רצפים לאורגניזמים אחרים, רואים שימור גבוה מסביב לאקסונים אלטרנטיביים.

Front 20

CLIP-seq

Back 20

cross-linking immunoprecipitation, מושכים חלבונים שיודעים שהם SR ואז ניתן למצוא רצפי בקרה.

Front 21

Machine learning

Back 21

מאפיינים אקסונים אלטרנטיבים (קצרים, אזורים סביבם שמורים, שמורים בעצמם, מתחלקים ב-3) ונותנים למחשב לחפש מקטעים שעונים על ההגדרה.

Front 22

SMA

Back 22

Spinal muscel atrophy, נגרם על ידי מוטציה בSMN1.

Front 23

SMN2

Back 23

גן הומולוגי לSMN1, אך עושה exon skipping לאקסון 7. רעיון לתרופה לSMA - אם אפשר יהיה לבטל את הexon skipping אז SMN2 יוכל להחליף את 1.

Front 24

Alu

Back 24

רטרוטרנספוזונים, נפוצים בגנים של פרימטים, מכילים אתרים שדומים לsplice sites ועל ידי מוטציות בודדות יכולים לעבור אקסוניזציה.

Front 25

Master gene model

Back 25

מודל שמסביר את פיזור הalu בגנום

Front 26

SINE

Back 26

Short interspaced elements, מקור לאקסונים חדשים בכלבים.

Front 27

hnRNP C

Back 27

מעכב שחבור, בתחרות עם U2AF65 ומונע מAlu שכבר מכילים splice sites לעבור אקסוניזציה.

Front 28

U2AF65

Back 28

מזהה 3' splice site ומעודד שחבור, בתחרות עם hnRNP C.

Front 29

ADAR

Back 29

אנזימים שעושים דה-אמינציה ל-A והופכים אותו ל-I (G), דורשים dsRNA. מגינים מפני וירוסים, משנים ח"א, משנים יציבות mRNA, משנים splicing. עושים לעצמם פידבק שלילי - ברמה גבוהה יוצרים לעצמם splice site שמוסיף PTC.

Front 30

ApoB

Back 30

גן שבו נוקלאוטיד 6666 עובר עריכה במעי מ-C ל-U (על ידי דה-אמינציה), ונוצר סטופ קודון שמקצר את החלבון.

Front 31

APOBEC-1

Back 31

האנזים שעורך את ApoB, דורש ssRNA.

Front 32

m6A

Back 32

edit שמוסיף מתיל על A, פונקציונליות לא ברורה, קורה בעיקר באקסונים ארוכים באזור הסטופ קודון.

Front 33

RIP-seq

Back 33

RNA immunopercipitation

Front 34

FTO

Back 34

הגן שמסיר את המתיל.

Front 35

H3K4me3

Back 35

חתימת כרומטין לפרומוטור

Front 36

H3K36me3

Back 36

חתימת כרומטין לאלונגציה

Front 37

HOTAIR

Back 37

lincRNA שנקשר לpolycomb complex שעושה מודיפיקציה לכרומטין ומכוון אותו (אבל לרוב נמצא לבד ללא הקומפלקס). בטרנס או בציס תוך כדי שעתוק שלו. ביטוי יתר בסרטן בקורלציה עם גרורות.

Front 38

PRC2

Back 38

מתיל-טרנספרז שמעכב שעתוק, חלק מהpolycomb complex.

Front 39

HAR

Back 39

human accelerated regions

Front 40

HAR1

Back 40

ncRNA במתבטא בקורטקס של בני אדם בלבד.

Front 41

TSSa-RNA

Back 41

Transcription start site associated RNA, מצאו RNA קטנים מאזור הפרומוטר לשני הכיוונים (אולי כדי לשמור על הפרומוטר פתוח?)

Front 42

tmRNA

Back 42

מכיל מבנה של tRNA ושל mRNA(עם ORF) ונכנס לריבוזום תקוע משחרר אותו ומסמן את הפפטיד לדגרדציה ומוביל את הmRNA הבעייתי לדגרדציה.

Front 43

RNase P

Back 43

ריבוזים, נחוץ למטורציה של tRNA, עובד עם חלבונים.

Front 44

SRP

Back 44

Signal recognition particle, מזהה את הsignal peptide ומוביל את הפפטיד המתורגם אל הSRP receptor. (מכיל חלבונים וncRNA)

Front 45

Riboswitch

Back 45

RNA שחש סמן פיזיולוגי ומגיב בהתאם (RNA רגולטורי שפועל בציס)

Front 46

PrfA

Back 46

ריבוסוויץ' בליסטריה, חש בטמפ' גבוהה, נפתח ומתגלה ה-RBS.

Front 47

SAM

Back 47

מטבוליט שיש לו ריבוסוויץ' שמזהה את נוכחותו, נקשר ונוצר סיגנל טרמינציה.

Front 48

אפטמר

Back 48

אזור החישה בריבוסוויץ'

Front 49

expresstion platform

Back 49

האזור בריבוסוויץ' שמשפיע על ביטוי הגן.

Front 50

GlcN6P

Back 50

הריבוסוויץ' מתפקד כריבוזים, בנוכחות התוצר שלו מבקע את עצמו.

Front 51

Glycine riboswtich

Back 51

קואופרטיבי, מכיל שני אפטמרים כלומר דרושים שני ליגנדים כדי שיחשף הRBS (של גנים שמבקעים את Gly)

Front 52

T-box

Back 52

ריבוסוויץ' של tRNA synthetase, קושר אנטיקודון של tRNA הספציפי ואם אין חומצה אמינית על הtRNA הוא קושר גם את הצד השני שלו ואז הסינתטז יתורגם ויטעין את הtRNAs הרלוונטים.

Front 53

TPP

Back 53

נחוץ לסינתזת נוקלאוטידים, יש לו ריבוסוויץ' שדומה בין מינים באפטמר אך שונה בexpression platform. בצמחים ללא TPP יש חשיפה של הסיגנל להוספת polyA ומתקבל טרנסקריפט קצר ויציב, בנוכחות TPP נחשף splice site שמוסיף PTC וגורם לNMD.

Front 54

sRNA

Back 54

RNA רגולטורי שפועל בטרנס. קצרים, משמשים כאקטיבטורים/רפרסורים של תרגום, רגולציה של שעתוק, דגרדציה של mRNA.

Front 55

Hfq

Back 55

חלבון שחובר לsRNA ומונע תרגום של mRNA על ידי הפרעה לריבוזום. RNA chaperone, מייצב את הקשר של sRNA וה-mRNA.

Front 56

RNase E

Back 56

חלבון שחובר לsRNA ומונע תרגום של mRNA על ידי פירוקו.

Front 57

RybB

Back 57

sRNA בE. Coli קומפלמנטרי לmRNA של OMP שונים. כאשר OMP מצטברים בפריפלזמה (כתוצאה מסטרס) הם מביאים להפעלה של סיגמה פקטור E, שגורם לשעתוק של RybB שמונע תרגום של OMPים.

Front 58

OMP

Back 58

Outer membrane proteins

Front 59

DsrA

Back 59

sRNA, בין היחידים שמייצבים את הmRNA (בקרה חיובית). חושף את ה-SD (Shine Delgarno) ואת קודון האיניציאציה של סיגמה פקטור 32.

Front 60

Hfq co-IP

Back 60

cross-linking ואימונופרסיפיטציה של Hfq, מאפשר לזהות sRNA חדשים.

Front 61

CRISPR

Back 61

Clustered regulatory interspaced short palindriomic Repeats.

Front 62

CAS

Back 62

CRISPR associated proteins

Front 63

crRNA

Back 63

CRISPR RNA, בעצם הsRNA שנחתך מהתעתיק הארוך ומכיל spacer וקצוות של repeats משני צידיו. הוא מכוון את הCASCADE אל הDNA/mRNA הויראלי.

Front 64

CASCADE

Back 64

הקופלקס של הCASים והcrRNA שמזהה את הDNA הויראלי.

Front 65

PAM

Back 65

protospacer adjacent motif, מוטיב שחייב להימצא ליד הספייסר בגנום הפאג' כדי שילקח משם הספייסר וגם כדי שיזהה אותו אח"כ.

Front 66

CAS1+CAS2

Back 66

נחוצים בשביל הכנסה של spacerים חדשים לגנום. מנגנון לא ידוע

Front 67

CAS3

Back 67

מבצע את הביקוע של הDNA הויראלי לאחר זיהוי ע"י הCASCADE

Front 68

RAMP

Back 68

subtype של CRISPR שמזהה RNA.

Front 69

R-loop

Back 69

הלולאה שנוצרת מפתיחת הDNA וזיווג בין גדיל אחד לcrRNA, הגדיל החופשי יבוקע על ידי CAS3.

Front 70

tracrRNA

Back 70

TypeII אינו מכיל CAS שהם אנדונוקלאזות אלא משתמש במקום בtracrRNA שמאפשר חיתוך של ה-crRNA מהתעתיק הגדול. נשאר בקומפלקס אחרי החיתוך.

Front 71

CAS9

Back 71

בtypeII מחליף את כל הCASCADE.

Front 72

NHEJ

Back 72

Non-homologous end joining

Front 73

sgRNA

Back 73

small guiding RNA, כשמשתמשים בCAS9 להנדסה גנטית נותנים לו גם RNA שמורכב מהtracrRNA ומה-crRNA

Front 74

Xist

Back 74

lincRNA שאחראי על x-inactivation בנקבות

Front 75

Airn

Back 75

דוגמה לפעולה ברמת השעתוק: antisense Igf2R RNA, הוא lincRNA שהפרומוטור שלו יושב בתוך הגן לIgf2R וכך מונע את השעתוק שלו בכרומוזום הפרנטלי (תהליך של imprinting), בנקבות הפרומוטור ממותל.

Front 76

ANRIL

Back 76

דוגמה לפעולה ברמה של nacent: הוא lincRNA שמגייס לאזור השעתוק שלו את polycomb ומשתיק גנים קרובים.

Front 77

HOTTIP & MIRA

Back 77

דוגמאות לפעולה ברמה של nacent: הם lincRNA שמגייסים לאזור השעתוק שלהם פקטורים מאקטבים לגנים קרובים.

Front 78

PACER

Back 78

דוגמה לפעולה ברמה של nacent: הוא lincRNA שמסיר באזור השעתוק שלו פקטורים שמעכבים (p50) את השעתוק של cox2 ואפשר היקשרות של פקטורים מאקטבים (p65).

Front 79

FIRRE

Back 79

דוגמה על הגבול בין ציס לטרנס: lincRNA מכרומוזום X (שאיכשהו לא מושתק) נשאר באזור השעתוק ומקרב 5 גנים מכרומוזומים שונים.

Front 80

Uchl1-as

Back 80

דוגמה לפעולה ברמת בRNA הבוגר: lincRNA עם חפיפה קטנה לUchl1, הוא קושר את הmRNA הזה ומעלה את התרגום שלו בעזרת אלמנט שנקרא SINEB2.

Front 81

CDR1-as

Back 81

דוגמה לפעולה ברמת בRNA הבוגר: lincRNA שהוא sponge RNA, "סופח" אליו את miR-7 כך שהוא לא יכול להיקשר לטרגט הטבעי שלו.

Front 82

NEAT1

Back 82

דוגמה לפעולה ברמה שבין nacent לבוגר: הוא lincRNA שכנראה אחראי ליצירת paraspecles. נוצרים באזור השעתוק שלו ואז זזים מעט, ומחייבים שעתוק מתמיד שלו כדי לא להעלם.

Front 83

Angelman syndrome

Back 83

Ube3a עובר imprinting, העותק הפטרנלי מושתק בעזרת lincRNA שנקרא Ube3a-as (שהוא אנטיסנס לגן). אם יש מחיקה של העותק המטרנלי מופיע הסינדרום. אחת הדרכים המוצעות לטפל בו היא על ידי ביטול ההשתקה של העותק הפטרנלי על ידי oligos שהם as ל-lincRNA.

Front 84

group I intron

Back 84

קיים בrRNA, עושה self splicing. עדות לקדמוניות הRNA.

Front 85

RNase P

Back 85

ריבוזים אנדונוקלאז שדרוש למטורציה של tRNA. עדות לקדמוניות הRNA.

Front 86

rRNA

Back 86

ribosomal RNA, מרכיבים את הריבוזום (2/3 מהמסה שלו), כנראה המרכיב הקטליטי (אבל אין הוכחה חד משמעית)

Front 87

RNase A

Back 87

מעכל ssRNA, שימש לפתרון המבנה השניוני של הrRNA

Front 88

RNase Ti

Back 88

מעכל dsRNA, שימש לפתרון המבנה השניוני של הrRNA

Front 89

snoRNA

Back 89

small-nucleolar RNA, ממוקמים בגרעינון. מתווכים מודיפיקציות על נוקלאוטידים וprocessing של הRNA (בrRNA ואולי גם בmRNA)

Front 90

U3 snoRNA

Back 90

מתווך ביקוע של rRNA.

Front 91

C/D-box snoRNA

Back 91

תת משפחה מכוונים מתילציה.

Front 92

H/ACA-box snoRNA

Back 92

תת משפחה מכוונים פסאודויורידילציה.

Front 93

snoRNP

Back 93

קומפלקס של snoRNA עם חלבונים.

Front 94

Prader-Willi syndrome

Back 94

נגרמת ממחיקה של snoRNA שנקרא HBII-52 שמעורב ב-alternative splicing של הרצפטור לסרוטונין.

Front 95

scaRNA

Back 95

snoRNA מיוחדים שנמצאים ב-Cajal bodies עושים מודיפיקציות ל-snRNAs. משועתקים ע"י RNA pol II במקום III.

Front 96

TERC

Back 96

Telomerase RNA comonent, שייך למשפחת H/ACA snoRNA נמצא בגרעינון עד לשכפול טלומרים.

Front 97

snRNA

Back 97

small-nuclear RNA, מרכיבים את הספלייסוזום. יתכן שעושים את הקטליזה בעצמם.

Front 98

tRNA

Back 98

transfer RNA.

Front 99

7SL SRP RNA

Back 99

מכוון פפטידים עם signal peptide לER. הAlu הגיעו ממנו.

Front 100

Vault RNA

Back 100

vault הוא אזור בתא ליד הגרעין, מכיל חלבונים וRNA - אורכו 80-110nt משועתק ע"י RNA pol III. תפקיד לא ידוע.

Front 101

Y RNA

Back 101

100nt תוצר של RNA pol III, קושר חלבון Ro60, קשור לשכפול DNA, תפקיד לא ברור.

Front 102

MALAT1

Back 102

lincRNA דומה לtRNA, עובר ביקוע עם RNase P ותוספת של CCA. תפקיד לא ידוע.

Front 103

sno-lincRNA

Back 103

lincRNA שעובר splicing ונשאר עליו snoRNA בקצוות ששומרים על היציבות שלו.

Front 104

miRNA

Back 104

microRNA, אורכם כ-22 בסיסים, משועתקים ע"י RNA pol II, פועלים באמצעות קומפלמנטציה.

Front 105

pri-miRNA

Back 105

פריקורסור ראשוני.

Front 106

pre-miRNA

Back 106

אחרי עיבוד ע"י ה-microprocessor. כ-70 בסיסים.

Front 107

micro-processor

Back 107

מורכב מDrosha ו-DGCR8

Front 108

exportin5

Back 108

דרכו יוצא ה-pre-miRNA מהגרעין.

Front 109

Dicer complex

Back 109

miR-RISC-loading complex, מעבד את ה-pre-miRNA ל-miRNA הבוגר, ומעמיס אותו על AGO ליצירת הRISC complex. הDicer complex מכיל את PACT, TRBP וAGO.

Front 110

RISC complex

Back 110

RNA induced silencing complex, מורכב מ-miRNA ו-AGO.

Front 111

lin4

Back 111

הmiR הראשון שנמצא, מעכב את התרגום של lin14, מעודד דיפרנציאציה.

Front 112

let7

Back 112

הmiR השני שהתגלה, שמור מאוד בכל הבילטריה. דוחף לדיפרנציאציה.

Front 113

seed

Back 113

7-8 בסיסים בmiR שעוברים את הקומפלמנטציה ל-mRNA. שלושה סוגים בסדר אפקטיביות עולה: 7mer-A1, 7mer-m8, 8mer.

Front 114

miR15 and miR16

Back 114

מדכאים את Bcl-2 שהוא אנטי אפופטוטי, הם mutually exclusive, בסוג מסויים של סרטן הם עוברים מחיקה ואז אין עיכוב של Bcl-2.

Front 115

פוליציסטרוני

Back 115

כאשר כמה miR משועתקים יחד (תחת אותו פרומוטור)

Front 116

אינטרגני

Back 116

כאשר לmiR יש פרומוטור משלו.

Front 117

אינטרוני

Back 117

כאשר ה-miR יושב באינטרון של גן אחר (כלומר מנצל את הפרומוטור של הגן הזה)

Front 118

miR-126

Back 118

אינטרוני לEgfl7, גן שחשבו שמבקר יצירה של כלי דם, בפועל ה-miR הוא זה שמבקר.

Front 119

miR-26b

Back 119

אינטרוני לctdsp2 ומעכב את התרגום שלו בנוירונים בוגרים. הpre-miR קיים כל הזמן, הרמות של Dicer מבקרות את רמות הmiR.

Front 120

DGCR8

Back 120

נקרא גם Pasha (partner of Drosha), חלק מהmicroprocessor, מזהה את קצה הstem (איפה שהRNA נפתח לשני חד גדיל) ומשמש כסרגל לDrosha שהוא זה שעושה את החיתוך בפועל.

Front 121

DiGeorge syndrome

Back 121

פגיעה בכלי דם עקב מחיקה של אזור שכולל את DGCR8.

Front 122

miRtrons

Back 122

אינטרונים קצרים (70 בסיסים) שאחרי splicing בעצם נמצאים במצב של pre-miR וכך מדלגים על השלב של ה-microprocessor.

Front 123

multinodular Goiter

Back 123

מחלה שנובעת ממוטציה נקודתית ב-Dicer ויצירה פחות יעילה של miR בבלוטת התריס.

Front 124

miR-451

Back 124

לא זקוק ל-Dicer עובר את הביקוע ע"י AGO2.

Front 125

lin28

Back 125

קושר את pre-let7 ובעזרת TUT4 מסמן אותו בpolyU לדגרדציה. שומר על פלוריפוטנטיות. מעוכב ע"י let7. נמצא קשור לגודל גוף.

Front 126

Ras

Back 126

בקרצינומה של הריאות יש ירידה ב-let7 ובעקבות כך עליה בRas. ראו שיש SNP בUTR של Ras שמונע קישור לlet7 וכך יש יותר סיכוי לסרטן.

Front 127

HMGA2

Back 127

אונקוגן נוסף שמעוכב ע"י let7. בתאים סרטניים לפעמים יש טרנסלוקציה שקוטעת את הUTR שלו וכך אין קשירה של let7.

Front 128

oncomiR-17-92

Back 128

משפחה של miR, מתבטאים בנוכחות myc (אונקוגן). מעכבים מתילציה ודאצטילציה של היסטונים ואפופטוסיס.

Front 129

miR-105

Back 129

מופרש מתאי סרטן שד, נקלט ע"י תאי האנדותל, מחליש את הtight junctions ומאפשר גרורות.

Front 130

Hippo

Back 130

tumor supressor, קושר את YAP (אונקוגן) בציטופלסמה. ללא Hippo יכול YAP להיכנס לגרעין ולתפוס את p72 (שמיעל את פעילות הmicroprocessor) וגורם לירידה כללית בmiR בגידולים.

Front 131

myo-miRs

Back 131

miR ספציפיים לשרירים ומשתתפים בהתפתחות שלהם.

Front 132

miR-1/133

Back 132

מתבטא בהתפתחות שריר הלב ושרירי השלד. מבוקר ישירות ע"י TF שספציפים להתפתחות השריר. מקדם התפתחות שריר ומדכא תוכניות התפתחות אחרות. אחרי התחייבות לגורל של שריר מעכב התפתחות של שריר חלק ומעודד התפתחות של שרירי שלד.

Front 133

SRF

Back 133

TF של שריר חלק, מעוכב ע"י miR-1/133

Front 134

Texel sheep

Back 134

כבשים בשרניות כי יש להן SNP בUTR של myostatin שיוצר אתר קישור לmiR-1.

Front 135

miR-208

Back 135

משפחה של miR, נמצאים באינטרונים של myosin heavy chains. יוצר סוויטץ' בין שתי תכניות של שרירים - התכווצות מהירה ואיטית. הנוכחות בשריר הלב חשובה כדי לדכא שרשרת כבדה של מיוזין של התכווצות מהירה ולגרום לביטוי של התכווצות איטית (שמאפיינת את שריר הלב)

Front 136

miR-430

Back 136

הmiR הנפוץ בשלבים הראשונים של דגי זברה, כמסתכלים על המטרות שלו רואים שקודם יש ירידה בתרגום ורק אח"כ RNA decay.

Front 137

GW182

Back 137

חלבון שמאפיין P-bodies, נקשר ל-RISC ביחד הם מונעים קישור של חלבונים לPolyA (אלה שמחברים polyA לcap ויוצרים mRNA מעגלי) וכך מונעים תרגום. בנוסף מגייס את CCR4-NOT שעושה דאדנילציה ו/או את DCP שעושה de-capping. בנוסף יכול לגייס את TUT4/7 להוספת polyU כסימן לגדרגציה. חשוב גם למנגנון הRNAi.

Front 138

AGO2

Back 138

הAGO היחיד עם פעילות קטליטית, עושה מטורציה לpre-miR-451 ואת מנגנון הsiRNA.

Front 139

P-bodies

Back 139

foci (אזורים) בתא שלא תחומים בממברנות, מכילים mRNAs מעוכבים (שהובאו לשם ע"י RISC) וחלבונים שקשורים לturnover של mRNA.

Front 140

Stress Granules

Back 140

אזורים בתא שנוצרים בעקבות סטרס, eIF2 עובר פוספורילציה והתרגום מפסיק וה-mRNA עוברים לגרנולות האלו. גם הRISC עובר לשם מהP-bodies.

Front 141

Sponges

Back 141

RNA בעלי אתרי קישור של miR, ומשמשים לעיכוב פעולתם (במקום פירוק שלהם)

Front 142

HSUR1+2

Back 142

ספוג ויראלי

Front 143

lincMD1

Back 143

ספוג של miR133, הם משועתקים באותו RNA. החלבון HuR שמעוכב ע"י miR-133 מונע את הביקוע של miR-133 מlincMD1.

Front 144

miR-145

Back 144

מעכב TF של פלוריפוטנטיות שגם גורמים לשעתוק של ספוג של miR-145 בשם lincRoR.

Front 145

circRNA

Back 145

RNA מעגלי שנוצר ע"י back splicing, משמשים בד"כ כספוגים, עמידים לאקסונוקלאזות.

Front 146

ceRNA

Back 146

competing endogenous RNA, כאשר יש כמה mRNA שהם מטרות של אותו miR, אם הכמות של אחד מהם תעלה הוא יתפוס את כל הmiR וכך תעלה גם הכמות של שאר הmRNA.

Front 147

PTEN

Back 147

mRNA שעולה בסוג מסויים של סרטן ואז גם עולים ה-co-ceRNA שלו.

Front 148

PTENP1

Back 148

פסאודוגן של PTEN שיכול לשמש כceRNA שלו.

Front 149

HMGA2

Back 149

גן שמבוקר ע"י let7, בסוג מסויים של סרטן הוא עובר דופליקציה וכך הרמות שלו בתא עולות והוא משחרר גן אחר שמבוקר ע"י let7 שגורם לגרורות.