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38 Cards in this Set
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Quelle est la 1e mesure d’importance pour contrer transmission agents pathogènes ? |
Lavage des main (1847) |
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Quelle année introduction des mesures de protection universelle? |
1985 |
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3 objectifs du contrôle des infections ? |
1. Protéger patient/personnel contre infections 2. Réduire nb de m.o pathogène pour permettre au syst. Immu. De prévenir infections 3. Briser cycle de l’infection et éliminer contamination croisée |
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Le principe directeur du contrôle des infections? |
Traiter tout patient comme s’il était infectieux |
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Nommer quelques principes de base : |
- maintenir chaîne d’asepsie - ce qui doit être stérilisé me doit jamais être seulement désinfecté - possible décontaminer instrument avant de stériliser mais pas inverse |
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Quelques obligations : |
- tout instrument en bouche doit être stérilisé avant utilisation - environnement = désinfecté - matériel/instrument de salle opératoire doivent être stériles/ emballés / à l’abris des aérosols |
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4 catégories de m.o ? |
1. Bactéries 2. Virus 3. Champignons 4. Prions |
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Les +/- résistants parmis les m.o : |
+ résistants : les prions - résistants : virus à enveloppe Pour bactéries sporulées = stérilisation |
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4 conditions pour avoir une infection : |
1. Hôte susceptible (immunodéprimée, malade) 2. Porte d’entrée (nez,bouche) 3. Agent pathogène en quantité suffisante 4. Temps de contact suffisant |
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Quels sont les modes de transmission? |
1. Contamination directe (ex : éclaboussure oeil) 2. Contamination indirecte (ex: par instrument contaminé) 3. Contamination croisée (ex: toucher dossier avec gants souillés) |
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Quelles sont les protections personnelles ? |
- uniforme / sarrau - verre protecteur / visière - masque chirurgical - gants |
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Quelques consignes générales de l’antisepsie des mains : |
- antisepsie main avec gels à base alcool (60-90%) peut remplacer lavage main normal ; 30 sec - lavage antiseptique : nettoyant base alcool + efficace ; 45-60 sec |
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1re source de contamination (causes, règles à suivre) : |
Le patient Causes : sang, salive, biofilm Règles : verifier QM chaque visite / utiliser matériel jetable à usage unique |
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2e source de contamination (causes et règles à suivre) : |
L’eau de l’unité dentaire Causes : eau des conduites Règles : expulser eau des conduites ; 3 min au début et fin de journée et après repas / 30 sec entre patients |
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3e source de contamination (causes et règles) : |
Le système d’évacuation Causes : fluides buccaux et 1/4 par succion Règles : irriguer tubulaire avec eau chaude / utiliser solution enzymatique / percer orifice bout jetable |
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3e source de contamination (causes et règles) : |
Le système d’évacuation Causes : fluides buccaux et 1/4 par succion Règles : irriguer tubulaire avec eau chaude / utiliser solution enzymatique / percer orifice bout jetable |
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4e source de contamination (causes et règles) : |
L’air ambiant Causes : présence aérosols créés par toux Règles: réduire formation aérosols / succion rapide et digue/ placer couvercle bain ultrasonic |
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5e source de contamination (cause et règles) : |
La poussière Cause : aucune Règle : épousseter |
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Quelques trucs pour prévention du patient : |
- mise à jour QM à chaque visite - utiliser rince-bouche avant traitement - verres protecteurs durant toute séance - pas utiliser eau et air en mm temps |
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1re étape du contrôle des infections |
Le nettoyage (décontamination) Action mécanique qui réduit nb de débris visibles AVANT désinfection/stérilisation |
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Qu’est ce que bionettoyage ? |
Nettoyer surfaces des plus propres au plus souillées, du haut vers le bas Nécessite tjrs protections |
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2e étape du contrôle des infections ? |
La désinfection (désinfecter ce qui n’est pas stérilisé mais pas possible de stériliser ce qui n’est pas désinfecté) |
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Critères d’un bon désinfectant ? |
- DIN (identification par santé Canada) - mention : tuberculocide - connaître avantages/inconvénients des agents actifs - odeur |
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3e étape du contrôle des infections ? |
La stérilisation Principe de base : ne pas désinfecter (avec désinfectant) ce qui doit être stérilisé |
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3 classification de Spaulding |
1. Critique : pénètre tissus mous/durs, stérilisation ou matériel jetable 2. Semi-critique : entre en contact avec muqueuses, stérilisation 3. Non-critique : ne touche pas muqueuses, désinfection |
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1er type de stérilisateur ; avantages et inconvénients |
Autoclave type N (gravité) Avantages : efficace, non-toxique, rapide (15-20 min) Désavantages: peut être corrosif, endommager plastique |
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À quoi sert utilisation du cycle non emballé ou « flash »? |
Seulement instruments qui doivent être stérilisés rapidement |
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2e type stérilisateur ; avantages et inconvénients: |
Autoclave type B (pression sous-vide) Avantages : détruit prions, performance supérieure pour instrument creux Désavantages : + dispendieux, cycles + longs |
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3e type stérilisateur ; avantages et inconvénients : |
Vapeur chimique non-saturée Cycle de 30 min. Avantages: non-corrosif, emballages non-humides Désavantages : dégage odeur, stérilise pas liquide |
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4e type stérilisateur? |
Stérilisation à froid Seulement lorsque chaleur est impossible! Immersion solution chimique ; objets rincés à fond avec eau stérile et être emballés |
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Glutaraldlyde 2% VS peroxyde d’hydrogène 7% |
2 % : 10-12h , toxique, irritant pour peau et yeux, matériel non-emballés 7%: 20 min, non-toxique, biodégradable, compatible avec plastique |
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Nommer quelques principes de stérilisation : |
1. Calculer temps seulement à partir du moment temperature est atteinte 2. Côté vers haut pour meilleur séchage 3. « Peel-pouches » ou papier bleu = usage unique/ pas réutilisable 4. Jamais surcharger stérilisateur 5. PAS exposer paquet à la lumière directe (UV) |
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Quelle est la seule façon de vérifier un stérilisateur ? |
Indicateur biologique (mensuellement) |
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Quel est indicateur chimique ? |
Sur l’emballage, sensible à température / temps Identifie prob. Majeurs, PAS utilisé instrument contenu dans paquet PAS stérilisé, utiliser à tous cycles de stérilisation |
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Indicateur biologique ? |
Bande papier imprégnée de spores bactériennes - placer dans stérilisateur -changer chaque mois/semaine et envoyer 1x / mois dans labo pour vérification |
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Indicateur physique ? |
Vérifier capacité de l’appareil 1x/semaine |
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recommandations pour stérilisation ? |
-TJRS nettoyer instruments avant stériliser - tjrs sellé sac et gardé sellé jusqu’a utilisation - assurer que vérification bio est efficace - s’assurer d’une bonne ventilation |
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Causes d’échec de la stérilisation ? |
85% causés par erreurs humaines -instruments mal nettoyés - emballages non-conformes - surcharge de stérilisateur |
