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48 Cards in this Set

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Td2

Culture cellulaire

Pourquoi faire des cultures

Comprendre un processus physiologique


Produire des molécules a usage diagnostique ou thérapeutiques

Types de cultures

Primaires


Secondaires


Lignée cellulaire immortalisées


Cellules souches

Cultures primaires

Cellules isolées a partir de tissus ou d'organes ex Vivo


Seulement quelques divisions

Cultures secondaires

Cultures primaire +++


Quelques divisions en plus

Lignée immortalisée

Immortelles


Peuvent être transformées (ex : cancéreuses)


Pas de limite de croissance

Cellules souches

Indifférenciées, peuvent évoluer en n'importe quel type cellulaire spécialisé

Limite de hayflick

Nombre de fois qu'une population de cellules normales de divise au maximum

Milieux de culture

Milieu de base selon le type cellulaire


Complètements


Sérum (bovin ou cheval)

Milieu de base composé de

Eau


Source de C et d'énergie


A.a.


Sels minéraux


Vitamines


pH constant

Complètements sont

Antibiotiques

Serum =

Hormones


Facteurs de croissance

Quels supports ?

Plastique traité (agents oxydants,UV)


revêtement de surface (collagène laminine)

Équipements

Hotte a flux laminaire (stérilité et sécurité)


Incubateurs


Autoclave


Congélateur a -80 ou container a azote liquide

Méthodes de quantification des cellules

Comptage (hematimetre)


Tests colorimétrique


Bases marquées


CFSE

Hematimetre

Méthode directe


Comptage de toutes les cellules sur cadre de Malassez


mesure la croissance cellulaire

Tests colorimétrique


MTT ou bleu de trypan


Méthodes indirectes


Comptage de cellules marquées (vivantes ou mortes selon test)

MTT

Mesure la viabilité cellulaire via l'activité des deshygrogenases mitochondriales

Bleu de trypan

Mesure la mort cellulaire car il ne se fixe que dans les cellules mortes, les vivantes le rejettent

Bases marquées

Radioactivité (thymidine tritiée) ou immunomarquage (BrdU)


Méthodes indirectes


Activité mitogene


Mesure de la réplication cellulaire

Marquage a la CFSE

Cellule marquée est fluo, intensité diminue quand la cellule se divise donc 1 pic = une population de cellule divisée


Méthodes indirectes


Mesure de la prolifération

Mesurer l'expression des gènes a deux niveau

Hybridation in situ pour l'ARNm


Immunomarquage et protéine de fusion pour les protéines

Principe et Types d'Hybridation in situ

Sonde marquée se colle a l'arnm d'intérêt


Enzyme (visible au MO)


Fluorochrome (MF)


Billes d'or (ME)

Pour faire de la transfection il faut ... Et ça permet de ...

Faire un plasmide


Étudier la fonction d'un gène ou d'une protéine dans une cellule qui ne possède pas naturellement le gène

Étapes Essentielles

Construire le plasmide


Réplication du plasmide


Introduire le plasmide


Production/étude de la protéine

Carte plasmidique

ADNc = adn complémentaire a l'arnm du brin voulu

Types de promoteurs

Ubiquitaires


Spécifiques d'un tissu


Inductibles

Ubiquitaires

S'exprime partout


Ex : cmv d'origine virale; promoteurs de l'actine/tubiline


Inductibles

Hormones dependant


Inductibles au cuivre


Avec des antibiotiques

Ex de promoteur inductible

Tet-off : inhibe le facteur de transcription (mauvaise confirmation)


Tet-on : active le facteur de transcription (bonne confirmation)

Entrée du gène d'intérêt par

Transformation


Transfection


Transduction virale

Transformation

Adn plasmidique dans une bactérie via chaleur et electropotation

Transfection

Adn plasmidique dans une cellule eucaryote via techniques physique,chimique ou biologiques

Transduction virale

Transfection grâce a un vecteur viral non replicatif

Méthodes physiques

Microinjections directe dans le noyau


Electroporation


Bombardement de microprojectiles

Méthodes chimiques + principe

Phosphate de calcium


DEAE dextran


Liposomes cationiques : lipofection


Principe : surface cellulaire et adn sont chargées négativement, on va rentre l'ADN neutre pour qu'il puisse passer

Méthodes biologiques

Vecteurs retroviraux

Microinjections

Cellule par cellule


Besoin de machine et de manipulateur

Electroporation

Électricité va désordonné la membrane, plasmide rentre par les pores

Phosphate de calcium

Adn + tampon phosphate + cacl2 => précipité de phosphate de calcium contenant adn

Deae dextran

Longue chaîne chargée positif qui se complexe avec adn

Liposomes cationiques

Lipides chargés positif contenant adn => neutre, peut passer la membrane

Vecteurs pour la transduction virale

Vecteurs non intégratifs et integratifs

Non integratifs

Virus a adn double brin (adeno pour les mammifères, baculo pour les insectes)

Integratifs

Virus a arn (rétrovirus)


Intégration dans le génome via transcription inverse

Rétrovirus avantages

Expression stable


Peut faire ça sur bcp de cellules


Applicable in vivo

Rétrovirus désavantage

Intégration aléatoire


Réponse antivirale possible

Transfection peut être

Transitoire ou stable